黑色素瘤細(xì)胞株是從一個經(jīng)過生物學(xué)鑒定的細(xì)胞系或原代培養(yǎng)物用單細(xì)胞分離培養(yǎng)或通過篩選的方法，克隆具有特殊性質(zhì)或標(biāo)志的單細(xì)胞獲得的細(xì)胞群，稱細(xì)胞株。細(xì)胞株的特殊性質(zhì)或標(biāo)志必須在整個培養(yǎng)期間始終存在。描述一個黑色素瘤細(xì)胞株時，必須說明它的特殊性質(zhì)或標(biāo)志。與細(xì)胞系類似，如果不能繼續(xù)傳代或傳代代數(shù)有限，可稱為“有限細(xì)胞株（finitecellstrain）”。如果可以連續(xù)傳代，則可稱為“連續(xù)細(xì)胞株（continouscellstrain）”。再由原細(xì)胞株進一步分離培養(yǎng)出與原株性狀不同的細(xì)胞群，可稱為亞株（substrain）。克隆（clone）則為黑色素瘤細(xì)胞株的一種特殊情況，指由一個細(xì)胞增殖所形成的群體。
黑色素瘤細(xì)胞株是實驗中非常常用的一個細(xì)胞株，在生物制藥中使用也非常廣泛。該細(xì)胞株培養(yǎng)條件簡單，貼壁強度適中，比較容易轉(zhuǎn)染，很適合用它來研究一般哺乳動物基因的功能。
黑色素瘤細(xì)胞株對于更換培養(yǎng)基，應(yīng)謹(jǐn)慎對待，更換培養(yǎng)基時，應(yīng)留一瓶細(xì)胞使用推薦的培養(yǎng)基培養(yǎng)，留作種子。更換培養(yǎng)基有兩種方法，zui簡單的方法是直接更換培養(yǎng)基，強制使細(xì)胞適應(yīng)新的培養(yǎng)基；還有一種更溫和的方法：傳代細(xì)胞的時候分成細(xì)胞兩瓶，*瓶使用原來推薦的培養(yǎng)基，第二瓶使用50%原來推薦的培養(yǎng)基，50%新的培養(yǎng)基，之后仔細(xì)觀察黑色素瘤細(xì)胞株的生長狀態(tài)，如果第二瓶細(xì)胞生長狀態(tài)不好，應(yīng)立即停止更換培養(yǎng)基，如果第二瓶生長狀態(tài)好，可以繼續(xù)傳代分瓶，一瓶使用50%原來推薦的培養(yǎng)基，50%新的培養(yǎng)基，另一瓶使用25%原來推薦的培養(yǎng)基，75%新的培養(yǎng)基，繼續(xù)觀察，如果細(xì)胞狀態(tài)好，可以全部換成新鮮的培養(yǎng)基。
黑色素瘤細(xì)胞株在培養(yǎng)瓶長成致密單層后，已基本上飽和，為使細(xì)胞能繼續(xù)生長，同時也將細(xì)胞數(shù)量擴大，就必須進行傳代（再培養(yǎng)）。傳代培養(yǎng)也是一種將細(xì)胞種保存下去的方法。同時也是利用培養(yǎng)細(xì)胞進行各種實驗的必經(jīng)過程。懸浮型細(xì)胞直接分瓶就可以，而貼壁細(xì)胞需經(jīng)消化后才能分瓶。一般使用蛋白水解酶（比如胰蛋白酶）消化貼壁細(xì)胞成單個黑色素瘤細(xì)胞株，也可加入乙二胺四乙酸（EDTA）提高消化能力，EDTA是一種二價離子的螯合劑，能抑制細(xì)胞膜上的Ca2+和Mg2+。常用的細(xì)胞消化液一般含有0.25%(w/v)的胰酶和0.03%(w/v)EDTA，一般用不含Ca2+和Mg2+的鹽溶液配置，先用胰酶-EDTA消化液清洗細(xì)胞（5.0-10.0ml/75cm），然后棄去消化液，重新加入少量的胰酶-EDTA消化液(2.0to5.0ml/75sq.cmflask)，觀察細(xì)胞直到細(xì)胞變圓脫離瓶壁，此過程一般需要5-15分鐘，為了避免細(xì)胞成團，消化細(xì)胞的過程中不要拍打細(xì)胞瓶。對于特別難消化的黑色素瘤細(xì)胞株，可以加入胰酶EDTA消化液后把細(xì)胞置于37°C促進消化，細(xì)胞脫離瓶壁后，立刻加入含有血清的*培養(yǎng)基中止消化，血清中某些蛋白質(zhì)能夠抑制胰酶的活性。一般情況下，離心并不需要。如果細(xì)胞需要無血清或者低血清的培養(yǎng)基，可以以125000g轉(zhuǎn)速離心5分鐘，然后棄去中止用的培養(yǎng)基，加入適合的新的培養(yǎng)基輕輕混勻細(xì)胞，移入到新的培養(yǎng)瓶。傳代的比例視細(xì)胞類型而定，一般是1:2-1:20，具體比例可參考說明書。胰蛋白酶會對某些黑色素瘤細(xì)胞株的細(xì)胞膜產(chǎn)生損傷，對于這種類型的細(xì)胞，可用細(xì)胞刮輕輕刮下細(xì)胞，加入適量的培養(yǎng)基，輕輕吹打混勻細(xì)胞，然后進行傳代培養(yǎng)。
